New Measuring Technique Discovered by Chance
Jülich, 7 October 2015 - Test measurements that appeared to have failed rewarded biomechanists at Jülich with an unexpected discovery. They found a new method of measuring the vibrations of biomembranes. Such measurements are important for comprehensively understanding how these ultrathin and highly elastic separating layers influence the transport of substances in cells. Thanks to the new technique, researchers can record membrane vibrations in living cells for longer periods of time and more flexibly than was possible in the past.
original message:
Per Zufall zu einer neuen Messmethode
Jo-Jo-Effekt macht Schwingungen von Biomembranen sichtbar
Jülich, 7. Oktober 2015 – Ein scheinbar gescheiterter Messversuch hat Jülicher Biomechanikern eine unerwartete Entdeckung beschert. Sie haben eine neue Methode gefunden, um Schwingungen von Biomembranen zu messen. Solche Messungen sind wichtig, um besser zu verstehen, wie diese hauchdünnen und sehr elastischen Trennschichten den Transport von Stoffen in Zellen beeinflussen. Mit der neuen Technik können Forscher Membranschwingungen in lebenden Zellen länger und flexibler als bisher erfassen. Daraus ergeben sich neue Forschungsperspektiven. Ihre Ergebnisse stellen die Jülicher Wissenschaftler in der aktuellen Ausgabe von Nature Communications vor.
Prof. Rudolf Merkel vom Jülicher Institute of Complex Systems (ICS-7) und seine damalige Doktorandin Cornelia Monzel wollten eigentlich die Diffusion von Molekülen durch eine Biomembran untersuchen. Solche Biomembranen, die für alle Zellmembranen charakteristisch sind, grenzen Bereiche innerhalb einer Zelle voneinander ab. Sie ermöglichen aber ausgewählten Molekülen von einer Seite der Membran zur anderen zu gelangen. Da die Membranen eine zähflüssige bis flüssige Konsistenz haben, können sich dort viele der Moleküle frei bewegen.
Für ihre Untersuchungen nutzten die Jülicher ein spezielles Lichtmikroskop, ein konfokales Fluoreszenz-Mikroskop. Dabei wird ein Teil der Moleküle mit einem Farbstoff markiert, der unter Lichteinfluss leuchtet. Das Mikroskop misst die Helligkeit dieser Moleküle in einem kleinen Probenausschnitt: Jedes markierte Molekül, das in diesen Ausschnitt wandert oder ihn verlässt, erscheint als ein helles Signal. Je schneller sich die Moleküle bewegen, desto kürzer ist das Signal zu sehen. Aus dem Signal lässt sich die Geschwindigkeit der Diffusion bestimmen. Der Knackpunkt: Wird zu viel Farbstoff verwendet, lässt sich die Diffusion einzelner Moleküle nicht mehr berechnen. Es leuchten dann zu viele einzelne Moleküle, so dass quasi der gesamte Ausschnitt dauerhaft erhellt wird. "Da wir aus Versehen zu viel Farbstoff benutzt haben, ist uns genau das passiert. Allerdings haben wir etwas Unerwartetes beobachtet: Die Helligkeit dieses großen Flecks schwankte", blickt Rudolf Merkel zurück.
Zuerst dachten die Forscher an einen Messfehler. Doch dann kam ihnen eine Idee: "Vielleicht war die Ursache für dieses Schwanken gar nicht die Bewegung der Moleküle, sondern Positionsänderungen der Biomembran", so Merkel. Denn eine lebende Membran ist kein starres Objekt. Sie bewegt sich auch während solcher Messungen auf und ab – und damit auch die markierten Moleküle in der Membran. Das ist so, als ob man mit der Kamera von unten ein auf- und abschwingendes Jo-Jo fotografiert. Ein konfokales Fluoreszenz-Lichtmikroskop ist aber auf eine bestimmte Höhe eingestellt, so als ob die Kamera auf einen bestimmten Bereich scharf gestellt wurde. Bei einer Kamera würden die Aufnahmen zwischen scharf und unscharf schwanken. Bei der Mikroskopie gilt: Je näher ein Molekül – oder in diesem Fall die gesamte Membran – dieser voreingestellten Höhe kommt, desto heller wird das Signal wahrgenommen. Cornelia Monzel führte weitere Messungen an Modellmembranen durch, deren Eigenschaften bereits genau bekannt waren. Die Ergebnisse passten perfekt, eine neue Messtechnik war entdeckt
Neben technischen Vorteilen – so liefert die Messtechnik nicht wie andere Methoden alle 10 Millisekunden ein Bild, sondern alle 10 Mikrosekunden – eröffnet sie der medizinischen Forschung neue Perspektiven: So haben die Jülicher Forscher mit ihrer Methode die Membranbewegung roter Blutzellen untersucht. Entgegen der bislang vorherrschenden Meinung stellten sie fest, dass es tatsächlich einen sehr geringen, aber durchaus signifikanten Anteil an Eigenbewegung gibt. Außerdem konnten sie erstmals messen, wie sich die Membran von weißen Blutzellen verstärkt bewegt, wenn die Zellen mit dem Protein Interferon-Gamma angeregt werden – bisher ließ sich die verstärkte Aktivität nur beobachten. Interferon-Gamma ist ein vom menschlichen Immunsystem produzierter Botenstoff, der an der Bekämpfung von Krankheitserregern beteiligt ist. "Krankheiten und Mutationen beeinflussen die Membranschwingungen. Mit unserer Technik könnten wir in Zukunft diesen Einfluss messen und vergleichen. Langfristig ließen sich so aus Messungen der Membranschwingungen Rückschlüsse auf Krankheiten ziehen", blickt Rudolf Merkel voraus. Eventuell spielen bestimmte Proteine dabei eine Rolle, die dann gezielt beeinflusst werden könnten.
Originalveröffentlichung:
Measuring Fast Stochastic Displacements of Bio-Membranes with Dynamic Optical Displacement Spectroscopy. C. Monzel, D. Schmidt, C. Kleusch, D. Kirchenbüchler, U. Seifert, A.-S. Smith, K. Sengupta und R. Merkel. Nature Communications, September 2015, DOI: 10.1038/ncomms9162.
Ansprechpartner:
- Institute of Biological Information Processing (IBI)
- Mechanobiology (IBI-2)
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Pressekontakt:
Erhard Zeiss
Wissenschaftlicher Kommunikationsreferent
- Institute of Neurosciences and Medicine (INM)
- Structural and Functional Organisation of the Brain (INM-1)
Room 3033